細胞培育
1、冷凍管應怎么凍結？
取出冷凍管后， 須當即放入37 ℃水槽中快速凍結， 輕搖冷凍管使其在1 分鐘內悉數消融， 并留意水面不可超越冷凍管蓋沿， 不然易發作污染景象。另冷凍管由液氮桶中取出凍結時， 有必要留意安全， 防止冷凍管之爆裂。ELISA試劑盒
2、細胞冷凍管凍結培育時， 是不是應立刻去掉DMSO？
除少數格外注明對DMSO 靈敏之細胞外， 絕大部分細胞株（包括懸浮性細胞）， 在凍結以后， 應直接放入富含10-15ml新鮮培育基之培育角瓶中， 待隔天再置換新鮮培育基以去掉DMSO 即可， 如此可防止大部分凍結后細胞無法成長或貼附之疑問。
3、可否運用與原先培育條件不一樣之培育基？
不能。每一細胞株均有其特定運用且已習慣之細胞培育基， 若突然運用和原先提供之培育條件不一樣之培育基， 細胞大都無法當即習慣， 形成細胞無法存活。
4、可否運用與原先培育條件不一樣之血清品種？
不能。血清是細胞培育上一個極為重要的營養來歷， 所以血清的品種和質量關于細胞的成長會發生*的影響。來自不一樣物種的血清， 在一些物質或分子的量或內容物上都有所不一樣，血清運用過錯常會形成細胞無法存活。ELISA試劑盒
5、何謂FBS, FCS, CS, HS ?
FBS (fetal bovine serum) 和FCS (fetal calf serum) 是一樣的意思， 兩者都是指胎牛血清， FCS 乃過錯的運用字眼， 請不要再運用。CS (calf serum) 則是指小牛血清。HS (horseserum) 則是指馬血清。
6、培育細胞時應運用5 % 或10% CO2？或底子沒有影響？
通常培育基中大都運用HCO3-/CO32-/H+ 作為pH 的緩沖體系， 而培育基中NaHCO3 的含量將決議細胞培育時應運用的CO2 濃度。當培育基中NaHCO3 含量為每公升3.7 g 時，細胞培育時應運用10 % CO2；當培育基中NaHCO3 為每公升1.5 g 時， 則應運用5 % CO2 培育細胞。
7、何時須替換培育基？
視細胞成長密度而定， 或遵循細胞株根本數據上之替換時刻，準時替換培育基即可。
8、培育基中是不是須增加抗生素？
除于特別挑選體系中外， 通常正常培育狀態下， 培育基中不該增加任何抗生素。
9、附著性細胞繼代時所運用之trypsin-EDTA 濃度？應怎么處理？
通常運用之trypsin-EDTA 濃度為0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。開瓶后應當即少量分裝于無菌試管中， 保留于–20 ℃，防止重復冷凍凍結形成trypsin 之活性下降， 并可削減污染之時機。
10、懸浮性細胞應怎么繼代處理？
通常僅需繼續參加新鮮培育基于原培育角瓶中， 稀釋細胞濃度即可， 若培育液太多時， 可將培育角瓶口端略微舉高， 直到無法包容停止。分瓶時取出一部份含細胞之培育液至另一新的培育角瓶， 參加新鮮培育基稀釋至恰當濃度， 重復前述過程即可。
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